α-SMA在金地鼠颊囊癌变过程中的动态观察
提 要 目的 动态观察金地鼠颊癌变过程中α-SMA表达规律,并分析其表达和癌变间的相关性。方法 采用免疫组化技术检测金地鼠颊囊白斑癌变模型标本的α-SMA表达情况。结果 在轻、中、重度异常增生及癌各组间,α-SMA 表达减少有显著差异。随病变恶性程度增加,α-SMA的表达量减少。结论 α-SMA是一种良好的癌前病变辅助诊断指标。
关键词 金地鼠颊囊 α-SMA 癌前病变材料和方法
材料
1. 实验动物:叙利亚品系金地鼠48只,由上海西普尔-BK公司提供。
2. 缓冲液配置(TRIS—HCL液,0.5M,pH7.6):TRIS 61g,加入340ml Hcl,用800ml蒸馏水充分混匀后,再以蒸馏水定容至1000ml。
3. 免疫组化试剂:ABC试剂盒由DAKO公司提供。
方法
1. 实验动物分组
空白对照组:6只,常规饲养,左侧颊囊涂布0.9%NaCl液,分别于4~9周后处死,取左侧涂药区颊囊组织共6例。
模型组:42只,常规饲养,左侧颊囊涂布0.5%DMBA丙酮液,分别于4~9周后处死,取左侧涂药区颊囊组织共42例。
2. α-SMA检测
取下的组织块常规石蜡包埋,连续切片2份各约5μm厚,一份HE染色光镜下病理分级;一份60℃烘箱内放置40分钟后,恒温箱中保持24~48小时,准备作α-SMA免疫组化染色。
免疫组化染色步骤如下
2.1 脱蜡水化:恒温箱中取出切片,二甲苯中15分钟×3次→100%、95%、90%、80%、70%梯度乙醇液中,每次均为5分钟→蒸馏水冲洗干净。
2.2 微波处理修理丢失的抗原决定簇:脱蜡水化后切片置缓冲液洗5min×3次,再置0.1M柠檬酸缓冲液中微波处理10min。
2.3 α-SMA染色前处理:缓冲液洗涤5min×3次→0.2% Triton-X 100中10min→清水冲洗5min×3次→0.3%H2O2中浸泡5min→5%牛奶中孵育30min。
2.4 α-SMA染色:常规ABC法。
3. 光镜下病理分级:标准参照1978年WHO口腔癌前病变协作中心诊断标准。
观察与计数
每侧高倍镜下计算相邻3个视野内α-SMA连续性染色血管密度值(连续性染色血管数/视野内血管总数×100%),取平均值。
统计学处理
采用单因素方差分析,Duncan法组间两两比较和相关分析。结 果
1. 光镜下病理分级结果
正常粘膜6例,炎症7例,轻、中和重度异常增生分别为12例、11例和9例,癌3例。
2. 免疫组化检测结果
涂DMBA不同周数组间α-SMA检测结果(表1)。表1 涂DMBA不同周数组间α-SMA连续性染色血管密度(%)
涂DMBA周数例数
第4周754.02±30.61第5周736.79±24.26第6周735.95±22.89第7周727.52±18.32第8周719.28±17.50第9周715.33±14.58图1示:随涂DMBA周数的增加,α-SMA表达量呈渐进性下降。
图1 涂DMBA不同周数组间α-SMA连续性染色血管密度(%)
从表2可见,正常颊囊粘膜与炎症组间粘膜下α-SMA连续性染色血管密度无显著性差别(P>0.05);鳞癌组较重度异常增生组粘膜下α-SMA连续性染色血管密度下降有显著性差别(P<0.05);其余各组间粘膜下α-SMA连续性染色血管密度有高度显著性差别(P>0.01)。
表2 不同病理变化组间颊囊粘膜下α-SMA连续性染色血管密度(%)
病理分级例数x±sα=0.05α=0.01正常粘膜6100.00±0.00AA炎 症7100.00±0.00AA轻度异常增生1256.35±8.45BB中度异常增生1120.86±5.50CC重度异常增生99.22±2.02DD癌32.64±0.35ED变量转换后,采用单因素方差分析,Duncan法作组间两两比较,字母相同为无显著差别。


图2 正常粘膜血管α-SMA染色(140倍)
图3 异常增生粘膜血管α-SMA染色(140倍)3. 相关分析结果
α-SMA连续性染色血管密度与病理分级呈高度负相关,即随病变恶性程度增高,α-SMA表达量下降(P<0.01)。
